МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ ИНТЕРСТИЦИЯ ЛЁГКИХ КРЫС ПОСЛЕ ПАРЕНТЕРАЛЬНОГО ВВЕДЕНИЯ НАНОЧАСТИЦ ДИОКСИДА КРЕМНИЯ

Проведен патоморфологический анализ клеточного состава интерстиция лёгких (крысы стока Wistar, самцы, 250-300 г, n=20) после однократного внутривенного введения 1 мл суспензии наночастиц диоксида кремния сферической формы, размером 13±2 нм (2 мг/мл). Изменения оценивались на 21-й и 60-й дни эксперимента. Отмечено нарастание диффузной инфильтрации альвеолярных перегородок макрофагами и лимфоцитами (р<0,05) при незначимом увеличении пула тучных клеток и эозинофилов. Формирования гранулём и пневмофиброза не наблюдалось. Выявленные реактивные изменения указывают на персистенцию дисперсных частиц кремнезёма в интерстициальных пространствах лёгочной ткани в течение всего срока наблюдения. Характер клеточных изменений указывает на то, что биораспределение изучаемых частиц в легких проходит при естественном рекрутировании фагоцитарного потенциала интерстициальных макрофагов.

диоксид кремния, Si02, наночастицы 12-16 нм, биораспределение, хроническая in vivo токсичность, поражение легких, макрофаги, тучные клетки, эозинофилы, silicon dioxide, SiO2, 12-16 nm nanoparticles, chronic toxicity in vivo, lesion of lung, macrophages, mast cells

1. Matoba T, Egashira K. Nanoparticle-mediated drug delivery system for cardiovascular disease. Int Heart J. 2014; 55(4):281-286.

2. Sundar D.S, Antoniraj M.G, Kumar C.S, Mohapatra S.S, Houreld N.N, Ruckmani K. Recent Trends of Biocompatible and Biodegradable Nanoparticles in Drug Delivery: A Review. Curr Med Chem. 2016. [Epub ahead of print].

3. Trevaskis N.L, Kaminskas L.M, Porter C.J. From sewer to saviour - targeting the lymphatic system to promote drug exposure and activity. Nat Rev Drug Discov. 2015;14(11):781-803.

4. Fang C.L, Wen C.J, Aljuffali I.A, Sung C.T, Huang C.L, Fang J.Y. Passive targeting of phosphatiosomes increases rolipram delivery to the lungs for treatment of acute lung injury: An animal study. J Control Release. 2015;213:69-78.

5. Braakhuis H.M, Park M.V, Gosens I, De Jong W.H, Cassee F.R. Physicochemical characteristics of nanomaterials that affect pulmonary inflammation. Particle and Fibre Toxicology. 2014;11:18.

6. Yoshiura Y, Izumi H, Oyabu T. Pulmonary toxicity of well-dispersed titanium dioxide nanoparticles following intratracheal instillation. Journal of Nanoparticle Research. 2015;17(6):241.

7. Zhuravskii S, Yukina G, Kulikova О, Panevin А, Tomson V, Korolev D, Galagudza M. Mast cell accumulation precedes tissue fibrosis induced by intravenously administered amorphous silica nanoparticles. Toxicology mechanisms and methods. 2016; 4: 260-269.

8. Ivanov S, Zhuravsky S, Yukina G, Tomson V, Korolev D, Galagudza M. In vivo toxicity of intravenously administered silica and silicon nanoparticles. Materials. 2012; 5(10): 1873-1889.

9. Yu Y, Li Y, Wang W, et al. Acute Toxicity of Amorphous Silica Nanoparticles in Intravenously Exposed ICR Mice. Xu B, ed. PLoS ONE. 2013;8(4): e61346.

10. Menter D.G, Patterson S.L, Logsdon C.D, Kopetz S, Sood A.K, Hawk E.T. Convergence of Nanotechnology and Cancer Prevention: Are We There Yet? Cancer prevention research (Philadelphia, Pa). 2014; 7(10): 973-992.

11. Carlander U, Li D, Jolliet O, Emond C, Johanson G. Toward a general physiologically-based pharmacokinetic model for intravenously injected nanoparticles. Int. J. Nanomedicine. 2016;11:625-40.