Экспрессия генов, ассоциированных с процессом аутофагии, в миокарде пациентов с гипертрофической кардиомиопатией различной генетической этиологии
https://doi.org/10.18705/2311-4495-2024-11-2-170-180
EDN: OMYQZC
Аннотация
Наиболее часто встречающийся вид кардиомиопатии у пациентов — гипертрофическая кардиомиопатия (ГКМП), определяемая по утолщению стенки левого желудочка. Одной из наиболее частых причин развития данного вида патологии являются мутации в генах саркомерных белков. Однако имеется большой процент пациентов, у которых не удается установить четкую причину развития ГКМП вследствие отсутствия мутаций причинных генов. Формирование выраженной гипертрофии миокарда стимулировало изучение внутриклеточных процессов поддержания гомеостаза, в частности аутофагии. Будучи одним из основных механизмов контроля качества белка в мышечных клетках, нарушение процесса аутофагии присутствовало при наличии мутаций саркомерных белков. Именно поэтому в данной работе мы сфокусировались на изучении изменения экспрессии основных маркеров, связанных с процессом аутофагии в образцах ткани миокарда, полученных от лиц с диагностированной ГКМП. Исследуемая группа пациентов была разделена на несколько подгрупп для сравнения полученных результатов в зависимости от найденной мутации. Было выявлено, что экспрессия маркеров аутофагии и гомеостаз митохондрий у пациентов с ГКМП, ассоциированной с наличием саркомерных мутаций, отличались от экспрессии данных генов относительно группы сравнения. В то время как в образцах от пациентов с мутациями в генах Z-диска, а также в генах, кодирующих лизосомальные ферменты, изменений экспрессии исследуемых маркеров процесса аутофагии обнаружено не было.
Об авторах
К. С. СухареваРоссия
Сухарева Ксения Сергеевна - PhD, младший научный сотрудник НИЛ молекулярной кардиологии и генетики Института молекулярной биологии и генетики, ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
ул. Аккуратова, д. 2, Санкт-Петербург, 197341
Конфликт интересов:
Нет
А. И. Михалева
Россия
Михалева Анна Игоревна - аспирант ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
А. В. Гурщенков
Россия
Гурщенков Александр Викторович - к.м.н., врач — сердечно-сосудистый хирург ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
В. В. Зайцев
Россия
Зайцев Вадим Витальевич - ассистент ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
А. А. Козырева
Россия
Козырева Александра Анатольевна - к.б.н., старший научный сотрудник НИЛ молекулярной кардиологии и генетики Института молекулярной биологии и генетики, ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
С. Е. Андреева
Россия
Андреева София Eвгеньевна - аспирант ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
Л. С. Гаврилова
Россия
Гаврилова Лидия Сергеевна - студент-магистр ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
О. М. Моисеева
Россия
Моисеева Ольга Михайловна - д.м.н., директор Института сердца и сосудов, ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
А. А. Костарева
Россия
Костарева Анна Александровна - д.м.н., директор Института молекулярной биологии и генетики, ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
В. К. Гребенник
Россия
Гребенник Вадим Константинович - заведующий отделением сердечно-сосудистой хирургии № 3, ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
М. Л. Гордеев
Россия
Гордеев Михаил Леонидович - д.м.н., профессор, главный кардиохирург ФГБУ «НМИЦ им. В.А. Алмазова» Минздрава России.
Санкт-Петербург
Конфликт интересов:
Нет
Список литературы
1. Devi S, Kim JJ, Singh AP, et al. Proteotoxicity: A Fatal Consequence of Environmental Pollutants-Induced Impairments in Protein Clearance Machinery. J Pers Med. 2021;11(2):69. DOI: 10.3390/jpm11020069.
2. Schreiber A, Peter M. Substrate recognition in selective autophagy and the ubiquitin-proteasome system. Biochim Biophys Acta. 2014;1843(1):163–81. DOI: 10.1016/j.bbamcr.2013.03.019.
3. Castets P, Frank S, Sinnreich M, Ruegg MA. “Get the Balance Right”: Pathological Significance of Autophagy Perturbation in Neuromuscular Disorders. J Neuromuscul Dis. 2016;3(2):127–55. DOI: 10.3233/JND-160153
4. Bonuccelli G, Sotgia F, Schubert W, et al. Proteasome inhibitor (MG-132) treatment of mdx mice rescues the expression and membrane localization of dystrophin and dystrophin-associated proteins. Am J Pathol. 2003;163(4):1663–75. DOI: 10.1016/S0002-9440(10)63523-7.
5. Bodine SC, Baehr LM. Skeletal muscle atrophy and the E3 ubiquitin ligases MuRF1 and MAFbx/atrogin-1. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2014;307(6):E469–84. DOI: 10.1152/ajpendo.00204.2014.
6. Tannous P, Zhu H, Johnstone JL, et al. Autophagy is an adaptive response in desmin-related cardiomyopathy. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;105(28):9745–9750. DOI: 10.1073/pnas.0706802105.
7. Carmignac V, Svensson M, Korner Z, et al. Autophagy is increased in laminin alpha2 chain-deficient muscle and its inhibition improves muscle morphology in a mouse model of MDC1A. Hum Mol Genet. 2011;20(24):4891–902. DOI: 10.1093/hmg/ddr427.
8. Gawlik KI, Durbeej M. Skeletal muscle laminin and MDC1A: pathogenesis and treatment strategies. Skelet Muscle. 2011;1(1):9. DOI: 10.1186/2044-5040-1-9.
9. Malicdan MC, Nishino I. Autophagy in lysosomal myopathies. Brain Pathol. 2012;22(1):82–88. DOI: 10.1111/j.1750-3639.2011.00543.x.
10. Al-Qusairi L, Prokic I, Amoasii L, et al. Lack of myotubularin (MTM1) leads to muscle hypotrophy through unbalanced regulation of the autophagy and ubiquitin-proteasome pathways. FASEB J. 2013;27(8):3384–94. DOI: 10.1096/fj.12-220947.
11. Claeys KG, Fardeau M. Myofibrillar myopathies. Handb Clin Neurol. 2013;113:1337–42. DOI: 10.1016/B978-0-444-59565-2.00005-8.
12. Fetalvero KM, Yu Y, Goetschkes M, et al. Defective autophagy and mTORC1 signaling in myotubularin null mice. Mol Cell Biol. 2013;33(1):98–110. DOI: 10.1128/MCB.01075-12.
13. Zech ATL, Singh SR, Schlossarek S, Carrier L. Autophagy in cardiomyopathies. Biochim Biophys Acta Mol Cell Res. 2020;1867(3):118432. DOI: 10.1016/j.bbamcr.2019.01.013.
14. Sandri M, Robbins J. Proteotoxicity: an underappreciated pathology in cardiac disease. J Mol Cell Cardiol. 2014;71:3–10. DOI: 10.1016/j.yjmcc.2013.12.015.
15. Verdonschot JAJ, Vanhoutte EK, Claes GRF, et al. A mutation update for the FLNC gene in myopathies and cardiomyopathies. Hum Mutat. 2020;41(6):1091–1111. DOI: 10.1002/humu.24004.
16. Cassandrini D, Merlini L, Pilla F, et al. Protein aggregates and autophagy involvement in a family with a mutation in Z-band alternatively spliced PDZ-motif protein. Neuromuscul Disord. 2021;31(1):44–51. DOI: 10.1016/j.nmd.2020.11.008.
17. Bhuiyan MS, Pattison JS, Osinska H, et al. Enhanced autophagy ameliorates cardiac proteinopathy. J Clin Invest. 2013;123(12):5284–97. DOI: 10.1172/JCI70877.
18. Pattison JS, Osinska H, Robbins J. Atg7 induces basal autophagy and rescues autophagic deficiency in CryABR120G cardiomyocytes. Circ Res. 2011;109(2):151– 60. DOI: 10.1161/CIRCRESAHA.110.237339
19. Song L, Su M, Wang S, et al. MiR-451 is decreased in hypertrophic cardiomyopathy and regulates autophagy by targeting TSC1. J Cell Mol Med. 2014;18(11):2266–2274. DOI: 10.1111/jcmm.12380.
20. Singh SR, Zech ATL, Geertz B, et al. Activation of Autophagy Ameliorates Cardiomyopathy in Mybpc3-Targeted Knockin Mice. Circ Heart Fail. 2017;10(10). DOI: 10.1161/CIRCHEARTFAILURE.117.004140.
21. Iskratsch T, Lange S, Dwyer J, et al. Formin follows function: a muscle-specific isoform of FHOD3 is regulated by CK2 phosphorylation and promotes myofibril maintenance. Journal of Cell Biology. 2010;191(6):1159–72. DOI: 10.1083/jcb.201005060.
22. Ruparelia AA, Oorschot V, Ramm G, Bryson-Richardson RJ. FLNC myofibrillar myopathy results from impaired autophagy and protein insufficiency. Hum Mol Genet. 2016;25(11):2131–2142. DOI: 10.1093/hmg/ddw080.
23. McNamara JW, Parker BL, Voges HK, et al. Alpha kinase 3 signaling at the M-band maintains sarcomere integrity and proteostasis in striated muscle. Nature Cardiovascular Research. 2023;2(2):159–173. DOI: https://doi.org/10.1038/s44161-023-00219-9.
24. Kumar V, Kumar P, Chauhan L, et al. Novel combination of FLNC (c.5707G>A; p. Glu1903Lys) and BAG3 (c.610G>A; p.Gly204Arg) genetic variant expressing restrictive cardiomyopathy phenotype in an adolescent girl. J Genet. 2022;101:54.
25. Teixeira CA, Almeida Mdo R, Saraiva MJ. Impairment of autophagy by TTR V30M aggregates: in vivo reversal by TUDCA and curcumin. Clin Sci (Lond). 2016;130(18):1665–75. DOI: 10.1042/CS20160075.
26. Yanagisawa H, Hossain MA, Miyajima T, et al. Dysregulated DNA methylation of GLA gene was associated with dysfunction of autophagy. Mol Genet Metab. 2019;126(4):460–465. DOI: 10.1016/j.ymgme.2019.03.003.
Рецензия
Для цитирования:
Сухарева К.С., Михалева А.И., Гурщенков А.В., Зайцев В.В., Козырева А.А., Андреева С.Е., Гаврилова Л.С., Моисеева О.М., Костарева А.А., Гребенник В.К., Гордеев М.Л. Экспрессия генов, ассоциированных с процессом аутофагии, в миокарде пациентов с гипертрофической кардиомиопатией различной генетической этиологии. Трансляционная медицина. 2024;11(2):170-180. https://doi.org/10.18705/2311-4495-2024-11-2-170-180. EDN: OMYQZC
For citation:
Sukhareva K.S., Mikhaleva A.I., Gurshchenkov A.V., Zaitsev V.V., Kozyreva A.A., Andreeva S.E., Gavrilova L.S., Moiseeva O.M., Kostareva A.A., Grebennik V.K., Gordeev M.L. Gene expression associated with the autophagy process in patient’s myocardium with hypertrophic cardiomyopathy of various genetic etiology. Translational Medicine. 2024;11(2):170-180. (In Russ.) https://doi.org/10.18705/2311-4495-2024-11-2-170-180. EDN: OMYQZC