Оценка красного костного мозга в доклинических исследованиях
https://doi.org/10.18705/2311-4495-2020-7-5-119-130
Аннотация
Актуальность. Исследование красного костного мозга (ККМ) в доклинических исследованиях является важной составляющей программы изучения лекарственного средства. Цель. Провести сравнительную оценку результатов, получаемых в параллельных исследованиях материала от одного и того же животного двумя разными методами для крыс, кроликов и мышей (цитологическое исследование материала, полученного из бедренной кости, и гистологическое исследование материала, полученного из грудины). Материалы и методы. Был изучен костный мозг, полученный от интактных животных. Цитологический препарат окрашивали по Романовскому–Гимзе, а гистологический подготавливали обычным образом и окрашивали гематоксилин-эозином. Окрашенные препараты исследовали с помощью микроскопа. Результаты. В результате данного исследования были получены массивы данных миелограмм с лейкоэритробластным соотношением и индексом созревания нейтрофилов. Заключение. При проведении доклинических исследований наиболее целесообразными можно признать забор костного мозга из бедренной кости; забор можно проводить как для цитологического исследования, так и для гистологического; с учетом высокой вариативности показателей в доклинических исследованиях миелограмм необходимо иметь группы интактных животных того же вида, не получавших исследуемый препарат; наименее вариативны оказались миелограммы у кроликов как по результатам собственных исследований, так и при сравнении с литературными данными, что позволяет признать кроликов наилучшим объектом для изучения состава и функции красного костного мозга. При сравнении литературных данных существенных закономерностей по количеству клеток в разных возрастных периодах у изученных видов животных не наблюдалось, и, следовательно, в доклинических исследованиях с анализом ККМ можно использовать животных любого возраста.
Об авторах
К. В. ТютинаРоссия
Тютина Ксения Владимировна, младший научный сотрудник группы фармакокинетики
пос. Кузьмоловский, стр. 245, Всеволожский район, Ленинградская область, 188663
Я. А. Гущин
Россия
Гущин Ярослав Александрович, руководитель отдела гистологии и патоморфологии
Санкт-Петербург
М. Н. Макарова
Россия
Макарова Марина Николаевна, д.м.н., заместитель директора по науке
Санкт-Петербург
В. Г. Макаров
Россия
Макаров Валерий Геннадьевич, д.м.н., директор
Санкт-Петербург
Список литературы
1. Valli VЕ, Villeneuve DC, Reed B, et al. Evaluation of blood and bone marrow, rat. In: Jones TC, Ward JM, Mohr U, et al., eds. Hemopoietic System. Berlin: Springer-Verlag, 1990: 9–26.
2. Bolliger AP. Cytologic evaluation of bone marrow in rats: indications, methods, and normal morphology. Vet Clin Pathol. 2004; 33 (2): 58–67.
3. Travlos GS. Normal structure, function, and histology of the bone marrow. Toxicol Pathol. 2006; 34 (5): 548–565.
4. Travlos GS. Histopathology of bone marrow. Toxicol Pathol. 2006; 34 (5):566–598.
5. Reagan WJ, Irizarry-Rovira A, Poitout-Belissent F, et al. Best practices for evaluation of bone marrow in nonclinical toxicity studies. Toxicol Pathol. 2011; 39 (2): 435–448.
6. Макаров В.Г., Макарова М.Н. Физиологические, биохимические и биометрические показатели нормы экспериментальных животных: справочник. СПБ.: ЛЕМА, 2013. 116 c.
7. Endicott KM, Ott M. The normal myelogram in albino rats. The Anatomical Record. 1945: 61–69.
8. Hulse EV. Quantitative cell counts of the bone marrow and blood and their secular variations in the normal adult rat. Acta Haematol. 1964; 31: 50–63.
9. Sabin FR, Miller FR, Smithburn KC, et al. Changes in the bone marrow and blood cells of developing rabbits. J Exp Med. 1936; 64 (1): 97–120.
10. Dikovinova NV. The absolute number of cells in bone marrow and myelograms of normal rabbits. Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 1957: 1129–1132.
11. Chervenick PA, Boggs DR, Marsh JC, et al. Quantitative studies of blood and bone marrow neutrophils in normal mice. Am J Physiol. 1968; 215 (2): 353–360.
12. Matsumoto K, Futamura Y. Cell counts in peripheral blood and bone marrow of male CBA/N mice. J Vet Med Sci. 1995; 57 (4): 755–756.
13. Воробьева О.В. Динамика морфофункционального состояния клеточных дифферонов костного мозга как органа кроветворения. Журнал анатомии и гистопатологии. 2017; 6 (2): 26–29.
14. Yang M, Büsche G, Ganser A., et al. Morphology and quantitative composition of hematopoietic cells in murine bone marrow and spleen of healthy subjects. Ann Hematol. 2013; 92 (5): 587–594.
15. Endicott KM, Gump H. Hemograms and myelograms of healthy female mice of C-57 brown and CFW strains. Blood. 1947; 1: 60–63.
Рецензия
Для цитирования:
Тютина К.В., Гущин Я.А., Макарова М.Н., Макаров В.Г. Оценка красного костного мозга в доклинических исследованиях. Трансляционная медицина. 2020;7(5):119-130. https://doi.org/10.18705/2311-4495-2020-7-5-119-130
For citation:
Tyutinа K.V., Gushchin Y.A., Makarova M.N., Makarov V.G. Evaluation of bone marrow in preclinical studies. Translational Medicine. 2020;7(5):119-130. (In Russ.) https://doi.org/10.18705/2311-4495-2020-7-5-119-130